dxy

    糖尿病（diabetes mellitus ，DM）已成为严重危害人类健康的公共卫生问题，DM及其并发症不仅严重影响糖尿病患者的生活质量，同时也是致残、致死的重要原因。因此，建立合适的糖尿病动物模型，阐明DM及其并发症的发病机制就显得尤为重要。目前，DM动物模型制备方法主要有：①手术切除胰腺；②化学药物诱导；③自发性糖尿病动物模型；④转基因动物等。

【切除胰腺的DM模型】　

    常采用狗、猫和大鼠等造模，全部或大部分切除实验动物的胰腺,但保存胰十二指肠动脉吻合弓。如果连续两天血糖值超过11.1mmol/L或行葡萄糖耐量试验120min时的血糖值仍未恢复到注射前水平则认为DM造模成功。其机制是全部或大部分切除胰腺后，β细胞缺如而产生永久性DM。

【化学药物诱发的DM模型】　

    采用链脲佐菌素腹腔注射或四氧嘧啶静脉注射可诱发DM，常用动物有小鼠、大鼠、家兔和狗。链脲佐菌素（streptozotocin STZ）的参考剂量为50～150mg/kg；四氧嘧啶（alloxan）的参考剂量为60～110mg/kg。

    STZ是一种含亚硝基的化合物，进入体内可通过以下机制特异性地破坏胰岛β细胞：①STZ直接破坏胰岛β细胞：主要见于注射大剂量STZ后。STZ注射后可引起β细胞内辅酶I（NAD）的浓度下降，NAD依赖性能量和蛋白质代谢停止，导致β细胞死亡。②通过诱导一氧化氮（NO）的合成，破坏胰岛β细胞；③STZ激活自身免疫过程，进一步导致β细胞的损害：小剂量注射STZ可破坏少量胰岛β细胞，死亡的胰岛β细胞可作为抗原被巨噬细胞吞噬，产生TH1刺激因子，使TH1细胞系占优势而产生IL-2及IFN-γ，在胰岛局部促使炎性细胞浸润，并活化释放IL-1、TNF-α、IFN-γ、NO和H2O2等物质杀伤细胞。死亡细胞又可作为自身抗原，再次递呈给抗原递呈细胞进行处理，释放细胞因子,放大细胞损伤效应，最终诱发DM[1]。

    四氧嘧啶进入体内后能迅速被胰岛β细胞摄取，影响细胞膜的通透性和细胞内ATP的产生，抑制葡萄糖介导的胰岛素分泌。四氧嘧啶主要通过产生氧自由基破坏β细胞结构，导致细胞的损伤及坏死，从而阻碍胰岛素的分泌，使血清胰岛素水平降低。因四氧嘧啶同时也造成肝、肾组织中毒性损害；另外，部分采用四氧嘧啶制造的DM动物模型可自发缓解，故目前已经很少应用。

【自发性糖尿病动物模型】　

    该模型绝大多数采用有自发性DM倾向的近交系纯种动物，如BB（Biobreeding）鼠、NOD（non-obesity　diabetes）小鼠、GK（Goto-kakisaki）鼠和中国地鼠（chinese　hamster）等动物造模。自发性DM动物模型是指动物未经过任何有意识的人工处置，在自然情况下发生DM的动物模型。已用于研究的自发性DM动物约有20种，可分为两类：一类为缺乏胰岛素，起病快、症状明显，并伴有酮症酸中毒，如BB（Biobreeding）鼠、NOD（non-obesity　diabetes）小鼠和LETL大鼠，它们可以作为1型DM的动物模型使用。这些动物没有肥胖，发病之初呈现胰腺炎的症状，人类组织相关性抗原（MHC）参与发病过程，这些都与人1型DM的特征相似。利用这些模型可以对人1型DM的发病机制进行深入研究。另一类为胰岛素抵抗性高血糖症，其特点是病程长，不合并酮症，为 2型DM动物模型。常用的2型DM自发性动物模型有中国地鼠(Chinese hamster)、GK(Goto-Kakisaki Wistar rats)大鼠、NSY (Nagoya-Shibata-Yasuda) 鼠和OLETF大鼠。

1．1型糖尿病动物模型

1.1 BB大鼠
    BB鼠是常用的1型DM动物模型，是由加拿大渥太华Biobreeding实验室培育而成。大约50%～80%BB鼠可发生DM，雄性与雌性大鼠发病率相当。BB大鼠一般于60～120日龄时发生DM，发病前数天可见糖耐量异常及胰岛炎。发病的大鼠具有1型DM的典型特征：体重减轻、多饮、多尿、糖尿、酮症酸中毒、高血糖、低胰岛素、胰岛炎、胰岛β细胞减少。需依赖于胰岛素治疗才能生存。BB大鼠另一个特点是其血液中淋巴细胞减少，易于感染。此外，BB大鼠发生淋巴细胞甲状腺炎的频率较高，其血清常可检测出抗平滑肌、骨骼肌、抗壁细胞和抗甲状腺球蛋白的自身抗体[2.3]。

1.2 NOD小鼠
    NOD小鼠为一自发性非肥胖DM小鼠，其发病年龄和发病率有着较为明显的性别差异，雌鼠发病年龄较雄鼠明显提早，发病率亦远高于雄鼠，NOD小鼠3-5周龄时开始出现胰岛炎，浸润胰岛的淋巴细胞常为CD4+或CD8+淋巴细胞，于13～30周龄时发生明显DM。与BB大鼠不同的是，NOD小鼠一般不出现酮症酸中毒，无外周血淋巴细胞减少，但同样需要胰岛素治疗以维持生存。在NOD鼠胰岛炎初期，血浆和胰岛灌注液中胰岛素的基础值和对葡萄糖的反应值均减低，同时胰高血糖素和胰高血糖素样物质的免疫活性增加。NOD小鼠葡萄糖激酶、丙酮酸激酶等活性下降，葡萄糖－6－磷酸脱氢酶和丙酮酸激酶的活性增加，肝组织中转氨酶、乳酸脱氢酶、支链氨基酸以及肾脏组织中的β-N-乙酰氨基葡萄糖苷酶、α-葡萄糖苷酶和α-甘露糖苷酶等活性也均降低[4.5]。NOD小鼠伴发DM是遗传、免疫和自由基损伤多因素综合作用的结果，NOD小鼠这些特点与1型DM患者相似，是研究关于1型DM遗传学、免疫学、病毒学特征及其预防和治疗等方面的良好动物模型。

1.3 LETL（long evans tukushima lean）大鼠
    LETL也是一种1型DM的动物模型，通常于8～20周龄时发生DM，雄性大鼠发病率约为21%，雌性大鼠发病率约为15%，如果在5～7周龄时使用环磷酰胺处理大鼠则其在16周龄时，DM发病率增加一倍。LETL大鼠无外周血淋巴细胞减少，在明显DM症状发生前4～5天，胰岛可见有明显的淋巴细胞浸润[6.7]。

2．2型糖尿病动物模型

2.1 嗜沙肥鼠(Psammonys Obesus，PO)　
    PO大鼠是生活在沙漠地区的啮齿类动物，该鼠具有明显的胰岛素抵抗，在高热量饮食条件下（数天～两周），90% 的PO大鼠可自发出现高胰岛素血症，并伴有明显的高血糖，随后出现胰岛素水平降低。PO大鼠的DM发病大致可分为以下四个阶段：①起始阶段：该阶段内血糖及血清胰岛素水平均正常；②高胰岛素血症期：该期血糖仍保持正常，但血清胰岛素明显升高；③高胰岛素和高血糖期：该期内血糖＞11.1mmol/L；④低胰岛素高血糖期：该期由于胰岛β细胞分泌功能损害导致低胰岛素和高血糖，大鼠需应用胰岛素治疗以维持生存[8~10]。Duhault等[11]发现PO大鼠在2型DM晚期呈胰岛素依赖性，胰腺组织学显示有胰岛炎存在，说明其具有迟发1型DM(Latent autoimmune diabetes mellitus in adult，LADA)的特点，故PO大鼠可能适用于LADA的研究。

2.2 中国地鼠　
    自发性DM地鼠模型是将健康的中国地鼠通过近亲繁殖而获得，这种模型以轻、中度高血糖为特征，动物为非肥胖型，血清胰岛素表现多样，胰岛病变程度不一，类似于人类的2型DM。多数地鼠DM发病在1岁龄以内，群体发病率约为20.88%[12]。

2.3 ＧＫ大鼠(Goto-Kakisaki Wistar Rats)
    GK大鼠是一个常用的自发性非肥胖2型DM模型，GK雌、雄鼠发病率相当，一般于3～4周龄时发生明显的DM，在高血糖发生前，常有一段血糖正常时期（从出生后到断奶），相当于人类的DM前期。其特征有：葡萄糖刺激的胰岛素分泌受损，β细胞数目减少60%，肝脏对胰岛素的敏感性降低，导致肝糖生成过多；肌肉和脂肪组织呈中度胰岛素抵抗。GK大鼠血压也较正常wistar大鼠高（低盐摄入约高15mmHg，高盐摄入约高24mmHg）；此外，GK大鼠具有与人类2型DM微血管并发症相似的改变如运动神经传导速率减慢、神经纤维有节段性脱髓鞘、轴突变性、视网膜血管内皮生长因子（VEGF）表达增加、视网膜局部血流减少、白蛋白尿、肾小球基底膜增厚、肾小球肥大和硬化等[13~15]。

2.4 Zucker DM肥胖(zucker diabetic fatty，ZDF )大鼠　
    ZDF大鼠是常用的2型DM动物模型，该鼠由于瘦素受体突变导致多食、肥胖同时伴有高胰岛素血症、高脂血症和中度高血压。雄性ZDF大鼠一般于8～10周出现DM，有DM的典型症状如多饮、多尿和体重增加缓慢，并可出现神经病变；雄性ZDF大鼠肌肉GLUT4表达明显降低，其胰岛β细胞GLUT2表达也明显下调，这可能是ZDF大鼠发生2型糖尿病的机制。组织学研究发现，6周龄大鼠胰岛即表现有结构紊乱和纤维化，胰岛β细胞脱颗粒，胰岛β细胞数量远低于相同周龄的非DM ZDF大鼠[16]。

2.5 NSY(Nagoya-Shibata-Yasuda)小鼠
    NSY小鼠是从jcl ICR远交系小鼠根据葡萄糖耐量选择繁殖产生的，具有年龄依赖性自发发生DM的特征。该鼠在任何年龄都无严重的肥胖，也无很高水平的高胰岛素血症，但在第24周龄出现显著的葡萄糖刺激的胰岛素分泌功能的减弱，病理学上未见胰岛增生或炎性改变等形态学异常，提示NSY小鼠发生2型DM的原因可能是胰岛β细胞对葡萄糖诱发的胰岛素分泌功能改变，胰岛素抵抗可能在其发病机理中发挥一定的作用[17]。NSY小鼠将有助于人们对2型DM遗传学倾向及病理发生的进一步研究。

2.6 OLETF(Ostuka Long-Evans Tokushima Fatty)大鼠
    OLETF大鼠是河野等利用Long-Evans系大鼠建立的自发性2型DM动物模型。该鼠由于胆囊收缩素(CCK)-A受体mRNA的表达完全缺失，导致其食欲亢进和肥胖，消化道对CCK-8刺激无反应，胰腺的内、外分泌功能均降低。此模型具有2型DM的特征如多食、肥胖、多饮和多尿，能缓慢地自然产生2型DM。OLETF大鼠自8周龄起血清甘油三酯、胆固醇和餐后血糖均明显高于对照鼠，随着年龄的增长，血清甘油三酯和餐后血糖不断升高。12周龄起出现明显的胰岛素抵抗；18周龄时，胰岛素敏感性约为对照组的20%；24周龄时，血浆胰岛素代偿性增加；30周龄时，血TG水平达到对照组的5倍；40周龄以后，胰岛的分泌功能降低；65周以后，血糖值高达25mmol/L，而免疫反应性胰岛素(IRI)水平却低于40pmol/L。OLETF大鼠尿蛋白自30周龄起明显增多，且随年龄的增加而迅速增加，雄性鼠55周龄时，尿蛋白含量可达800mg/d以上。组织学研究发现，OLETF大鼠胰腺呈进行性纤维化。20周龄时，胰腺即有明显的纤维化、胰岛增大；40周龄时，胰岛被结缔组织取代；70周龄时，胰腺极度萎缩，胰腺组织被脂肪和结缔组织代替。此外，OLETF大鼠在22周龄时，即可出现肾小球基底膜增厚；40周龄以后，雄性OLETF大鼠肾小球增大，肾小球膜基质增生及肾小球基底膜增厚；70周龄时，几乎在每一个肾小球周围都可见被扩张的毛细血管包围的PAS-阳性结节，这种结节性的改变膨胀到肾小球膜基质，OLETF大鼠的肾脏变化很类似人的DM结节性肾小球硬化症[18~21]。以上胰腺和肾脏不同阶段的病理变化，与临床2型DM患者的病理表现极为相似，为研究2型DM及其并发症的发病机制和胰岛素抵抗干预措施的评价提供了良好的实验动物模型。