细胞转染可以:
(1)真核细胞可以掺入外源 DNA 而获得新的遗传标志;
(2)应用于转基因动植物;
(3)应用于生物制药、基因治疗、RNA 干扰。
实验步骤:
一、细胞传代
1. 试验准备:200 ul/1 ml Tip 头各一盒(以上物品均需高压灭菌),酒精棉球,废液缸,试管架,微量移液器,记号笔,培养皿,离心管。
2. 弃掉培养皿中的培养基,用 1 ml 的 PBS 溶液洗涤两次。
3. 用 Tip 头加入 1 ml Trypsin 液,消化 1 分钟(37℃,5%CO2)。用手轻拍培养瓶壁,观察到细胞完全从壁上脱落下来为止。
4. 加入 1 ml 的含血清培养基终止反应。
5. 用 Tip 头多次吹吸,使细胞完全分散开。
6. 将培养液装入离心管中,1 000 rpm 离心 5 min。
7. 用培养液重悬细胞,细胞计数后选择 0.8X106 个细胞加入一个 35 mm 培养皿。
8. 将合适体积完全培养液加入离心管中,混匀细胞后轻轻加入培养皿中,使其均匀分布。
9. 将培养皿转入 CO2 培养箱中培养,第二天转染。
二、细胞转染
1. 转染试剂的准备
(1)将 400 ul 去核酸酶水加入管中,震荡 10 秒钟,溶解脂状物。
(2)震荡后将试剂放在 -20 ℃ 保存,使用前还需震荡。
2. 选择合适的混合比例(1:1-1:2/脂质体体积:DNA 质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的 MyoD 或者 EGFP 的 DNA,震荡后在加入合适体积的转染试剂,再次震荡。
3. 将混合液在室温放置 10-15 分钟。
4. 吸去培养板中的培养基,用 PBS 或者无血清培养基清洗一次。
5. 加入混合液,将细胞放回培养箱中培养一个小时。
6. 到时后,根据细胞种类决定是否移除混合液,之后加入完全培养基继续培养 24-48 小时。
三、第二次细胞传代
1. 在转染后 24 小时,观察实验结果并记录绿色荧光蛋白表达情况。
2. 再次进行细胞传代,按照免疫染色合适的密度 0.8X105 个细胞/35 mm 培养皿将细胞重新粉入培养皿中。
3. 在正常条件下培养 24 小时后按照染色要求条件固定。
4. 转染条件优化可以参考 TransFast 的使用说明书。