一、 Bisulfite Sequencing（Bisulfite-seq）样品要求
1. 样品类型：DNA 样品；
2. 样品的量：依单个样品所需数据量而定
3. 样品纯度：OD260/OD280：1.8～2.0；
4. 完整性：DNA 无明显降解，需提供电泳胶图。
二、 MeDIP Sequencing（MeDIP-seq）样品要求
1. 样品类型：DNA 样品；
2. 样品的量（单次）：≥ 5μg（请尽可能提供较多的样品）；
3. 样品纯度： OD260/OD280：1.8～2.0；
4. 完整性：DNA无明显降解，需提供电泳胶图。
三、 ChIP Sequencing（ChIP-seq）样品要求
• ChIP实验由合作伙伴完成，请提供：
1. 样品类型：DNA 样品；
2. 样品总量（单次）：≥ 10 ng（请尽可能提供较多的样品）；
3. 样品纯度： OD260/OD280：1.8～2.0
4. 样品浓度：≥5 ng/μl；
5. DNA片段大小：分布在100~500 bp范围，且主带明显。请提供DNA打断后的检测胶图以确定DNA片段大小是否符合要求。
6. 其他：请附加一份详细的样品信息单和提供ChIP后的q-PCR验证结果。
• ChIP实验由BGI 完成，请提供：
1. 样品类型：细胞系；
2. 细胞个数（单次ChIP）：≥5×107个（与人类基因组大小类似的物种，5×106可以考虑建库，请尽可能提供较多的细胞）
3. 细胞需进行预处理，BGI 已经建立了2种不同的ChIP实验平台满足不同实验的需求，预处理步骤分别如下：
Cross-linking Chromatin Immunoprecipitation (X-ChIP)送样前的处理：
1. 每一次ChIP实验至少需要 5×107个（与人类基因组大小类似的物种，5×10 6可以考虑建库）培养的细胞，以尽可能保证ChIP所得到的DNA量足以进行后续的测序文库构建。除此之外，还请提供一管专用于样品检测的细胞，大约为正式实验所需细胞量的 1/10即可。
2. 用PBS 缓冲液（pH 7.4）新鲜配制浓度为 1%的甲醛溶液，37℃水浴锅预热待用。
3. 弃除细胞培养液，加入预热的甲醛溶液，37℃放置10 min（建议水平摇床）。
* 对于悬浮培养的细胞，则建议800 g离心1 min后，吸去培养基上清，加入预热的甲醛溶液，重悬细胞后37℃放置10 min（建议垂直旋转摇床）。
4. 弃除甲醛溶液，分别用预冷的1×PBS+BSA（5 mg/ml）缓冲液及预冷的1×PBS缓冲液清洗细胞各一次，吸去上清。
* 对于悬浮细胞，均通过800 g离心1 min的方法进行洗涤，去除上清后加入新的溶液重悬细胞。
5. 滴加 500 μl冰预冷的 PBS 完全液（PBS+1×Protein Inhibitor Cocktail）至细胞培养皿中，然后将所有细胞转至 EP管中。
6．800 g离心 1 min，去除上清后-80℃冻存，或干冰送样至BGI。
Native Chromatin Immunoprecipitation (N-ChIP)送样前的处理：
1. 每一次ChIP实验至少需要 5×107个（与人类基因组大小类似的物种，5×106可以考虑建库）培养的细胞，以尽可能保证ChIP所得到的DNA量足以进行后续的测序文库构建。除此之外，还请提供一管专用于样品检测的细胞，大约为正式实验所需细胞量的 1/10即可。
2. 吸去细胞培养皿中的培养基。
3. 分别用预冷的1×PBS+BSA（5 mg/ml）缓冲液及预冷的1×PBS缓冲液清洗细胞各一次。
* 对于悬浮细胞，则采用800 g离心1 min去除培养基或PBS的方法进行处理。
4. 滴加 500 微升冰预冷的 PBS 完全液（PBS+1×Protein Inhibitor Cocktail）至细胞培养皿中，然后将所有细胞转至 EP管中。
5. 800g离心1 min，去除上清后-80℃冻存，或干冰送样至BGI。
注意：
1) 注意：BGI 将采用QUBIT 对 DNA样品进行检测， 最终DNA量以BGI的检测结果为准。
2) 若DNA总量超过样品要求，可以进行样品备份
3) 项目完成后，将不再保存剩余样品。
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