深入浅出详解单克隆抗体制备
制备单克隆抗体
1975年,Kohler和Milstein发现将小鼠骨髓瘤细胞和绵羊红细胞免疫的小鼠脾细胞进行融合,形成的杂交细胞既可产生抗体,又可无限增殖,从而创立了单克隆抗体杂交瘤技术。单抗技术的突破不仅为医学与生物学基础研究开创了新纪元,也为临床疾病的诊、防、治提供了新的工具。本文详细介绍了单克隆抗体的制备流程,包括细胞融合,抗体检测,单克隆化,抗体的生产和鉴定等。文章从理论和操作等多个层面进行探讨,并对常见问题进行了重点分析。
制备单克隆抗体包括动物免疫、细胞融合、选择杂交瘤、检测抗体、杂交瘤细胞的克隆化、冻存以及单克隆抗体的大量生产,要经过几个月的一系列实验步骤,下面按照制备单克隆抗体的流程顺序,逐一介绍其实验方法。
一、细胞融合前准备
(一) 免疫方案
选择合适的免疫方案对于细胞融合杂交的成功,获得高质量的McAb至关重要。一般要在融合前两个月左右确立免疫方案开始初次免疫,免疫方案应根据抗原的特性不同而定。
1. 颗粒性抗原免疫性较强,不加佐剂就可获得很好的免疫效果。下面以细胞性抗原为例的免疫方案:
初次免疫 1×107/0.5ml ip (腹腔内注射)
↓ 2~3周后
第二次免疫 1×107/0.5ml ip
↓ 3周后
加强免疫(融合前三天) 1×107/0.5ml ip或iv(静脉内注射)
↓
取脾融合
2. 可溶性抗原免疫原性弱,一般要加佐剂,常用佐剂:福氏完全佐剂,福氏不完全佐剂。要求抗原和佐剂等体积混合在一起,研磨成油包水的乳糜状,放一滴在水面上不易马上扩散呈小滴状表明已达到油包水的状态。商品化福氏完全佐剂在使用前须振摇,使沉淀的分枝杆菌充分混匀。
初次免疫 Ag
1~50μg 加福氏完全佐剂皮下多点注射(一般0.8~1ml 0.2ml/点)
↓3周后
第二次免疫 剂量同上,加福氏不完全佐剂皮下或ip(ip剂量不宜超过0.5ml)
↓ 3周后
第三次免疫 剂量同上,不加佐剂,ip(5~7天后采血测其效价,检测免疫效果)
↓ 2~3周后
加强免疫,剂量50~500μg为宜,ip或iv
↓ 3天后
取脾融合
目前,用于可溶性抗原(特别是一些弱抗原)的免疫方案也不断有所更新,如①将可溶性抗原颗粒化或固相化,一方面增强了抗原的免疫原性,另一方面可降低抗原的使用量。②改变抗原注入的途径,基础免疫可直接采用脾内注射。③使用细胞因子作为佐剂,提高机体的免疫应答水平,促进免疫细胞对抗原反应性。
(二) 饲养细胞
在制备单克隆抗体过程中,许多环节需要加饲养细胞,如:在杂交瘤细胞筛选、克隆化和扩大培养过程中,加入饲养细胞是十分必要的。常用的饲养细胞有:小鼠腹腔巨噬细胞(较为常用)、小鼠脾脏细胞或小鼠胸腺细胞,也有人用小鼠成纤维细胞系3T3经放射线照射后作为饲养细胞,使用比较方便,照射后可放入液氮罐长期保存,随用随复苏。
小鼠腹腔巨噬细胞的制备
小鼠采用与免疫小鼠相同的品系,常用BaLb/c小鼠6~10周龄
↓
拉颈处死 浸泡于75%酒精,消毒3~5分钟
↓
用无菌剪刀剪开皮肤,暴露腹膜
↓
用无菌注射器注入6~8ml培养液
↓
反复冲洗,吸出冲洗液
↓
放入10ml离心管,1200转/分离心5~6分钟
↓
用20%小牛血清(NCS)或胎牛血清(FCS)的培养液混悬,调整细胞数1×105/ml
↓
加入96孔板,100μl/孔
↓
放入37℃ CO2孵箱培养
一般饲养细胞在融合前一天制备,一只小鼠可获得5~8×106腹腔巨噬细胞,若用小鼠胸腺细胞作为饲养细胞时,细胞浓度为5×106/ml,小鼠脾细胞为1×106/ml,小鼠的成纤维细胞(3T3)1×105/ml,均为100μl/孔。
(三) 骨髓瘤细胞
骨髓瘤细胞系应和免疫动物属于同一品系,这样杂交融合率高,也便于接种杂交瘤细胞在同一品系小鼠腹腔内产生大量McAb。
编辑: wangminchao