多肽基本常识
促进这些副反应的条件是高温,延长激活时间(即,混合酐形成后,加到alkylchlorocarbonate和amine成份的时间,amine组成的 空间占位,平共处和混合酐的不完整形成。幸运的是,大多这些副反应,除形成哑唑酮和脲烷外,可通过低温进行反应(~-15℃),大为减少,并且缩短活化时 间(~1-2分钟)。为了使哑唑酮和尿烷形成最少,要实行如下措施:1)必要性须用无水有机溶剂,乙酸,四氢喃,t-butand,或 acetonitrile;2)应使用tertiary碱和N-methglmorpholine;3)必须用C b2或tBoc N- α保护氨基酸。
虽然用isobutyl-和ethylchlorocarbonate常用来形成羰酐,但确有别的连接试剂,例如,EEQD和IIQD用来与 CarboxaP成份反应形成erhyl-或isobutyl carbonate衍生物。不同于传统酐程序,EEQD和IIQD不要求碱,也不要求低温,通常要求一种有机溶剂(有许多也用)中0.1-0.4M浓度的 等摩尔量的羰和氨成份。之后EEQD或IIQD多加5-10%,温合液室温搅拌15-24小时。真空除去溶剂后,残留物溶于乙酸,用 1NHaHCO3,10% 枸橡酸和盐水洗剂,之后用无水Na2So4干燥,蒸发,产品可以重晶结或层析纯化。
这种方法避免了用碱,但仍有消旋和尿烷副产物,水平与经典相当。所以优势中于容易方便,但应注意,两种方法的详细比较,目前为重仍未有。
十一、HPLC分析和纯化
分析HPLC使用柱子和泵系统,可以经受传递高压,这样可以用极细的微粒(3-10μm)做填料。由此多肽要在几分钟内高度被分析。
HPLC分两类:离子交换和反相。 离子交换HPLC依靠多肽和固相间的直接电荷相互作用。柱子在一定PH范围带有特定电荷衍变成一种离子体,而多肽或多肽混合物,由其氨基酸组成表现出相反 电荷。分离是一种电荷相互作用,通过可变PH,离子强度,或两者洗脱出多肽,通常,先用低离子强度的溶液,以后逐渐加强或一步一步加强,直到多肽火柱中洗 脱出。离子交换分离的一个例子使用强阳离子交换柱。如sulfoethylaspartimide通过酸性PH中带正电来分离。
反相HPLC条件与正常层析正相反。多肽通过疏水作用连到柱上,用降低离子强度洗脱,如增加洗脱剂的疏水性。通常柱子由共价吸附到硅上的碳氢烷链构成,这 种链长度为G4-G8碳原子。由于洗脱是一种疏水作用。长链柱比短链对小的,高带电肽好。另一方面大的疏水肽用短链柱洗脱好。然而,总体实践中,这两类柱 互变无多少显著差别,别类载体由碳水化合物构成,比如苯基。
典型的操作常由两绶冲剂组成,0.1%TFA-H2o和80% acetonitrile 0.1%TFA--H2o稀acetonitrile。用线型梯变以每分钟0.5%到1.0%改变的速度混合。常见分析和纯化用柱为 4.6×250mm(3-10μm)和22×250mm(10μm).如果用径向填柱,那么大小是8×100(3-10μm)和 25×250mm(10μm)
大量各种缓冲剂含许多不同试剂,比如heptafluorobutyric酸,0.1%磷酸, 稀He formic酸(5-6%,pH2-4), 10-100mM NH4HCO3, 醋酸钠/氨,TFA/TEA,磷酸钠或钾,异戊酚。这样许多不同组合可形成缓冲剂,但要注意一点:硅反相柱料不能长时间暴露于高pH,甚至微碱pH,因为 这样会破坏柱子。
十二、纯化
SPPS提取的粗肽含许多副产物,早期的纯化方法包括离子交换,分溶和反溶注析,更现代的方法是反相HPLC,一般于60残基或更少的肽很成功。当反相HPLC失败时,可按合离子交换HPLC。
通常分析HPLC结果用于决定纯化条件。例如,一种太肽用30%(0.1%TFA)acetonitrile洗脱出,这是分析HPL定出的。那么选择 acctonitrile浓度更低的缓冲液使得在isocratic条件下(比如28%,0.1% TFA acetonitrile)多肽在溶剂保持时间4-5分钟后洗脱。这样,根据柱子类型,我们的纯化条件用16-35%(0.1%TFA) acetonitrile线型梯度, 在一两小时内完成,之后用分析HPLC查检各种比例,使用我们isocranic条件选定的缓冲液。
编辑: wangminchao