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活体动物可见光成像仪器原理与操作流程
一、仪器原理
以NightOWL ⅡLB 983为例,来说明活体动物可见光成像系统的仪器设计原理。整个仪器由CCD配合密闭性非常好的暗箱、荧光配件、麻醉系统和软件组成。CCD镜头位于暗箱的左上方,荧光光源和光路位于右上方,动物平台(可加热,以保持观察实验动物的体温)位于暗箱的下方,麻醉系统通过管道与暗箱连接。
选择适当的CCD镜头,对于体内可见光成像是非常重要的。选用的CCD镜头对于波长450-700nm的光必须具有非常高的灵敏度和量子效率,而且由于需要探测的光源在皮下几厘米处,其噪声信号要尽可能的小。科研人员经过探索发现,背照射背部薄化冷CCD是唯一合适的选择。这种CCD芯片温度可达<-800C,在该温度下,芯片的暗电流和阅读噪音降到几乎可以忽略不计的水平,同时配合密闭性非常好的暗箱,使得该系统检测生物发光和荧光具有无与伦比的灵敏度。CCD由软件控制升降,自动聚焦,可以获得从3.5厘米到25厘米的连续视野。
成像暗箱屏蔽宇宙射线及一切光源,可以使暗箱内部保持完全黑暗,CCD所检测的光线完全由被检动物体内发出,避免外界环境的光污染。
在荧光配件的设计方面,光源采用75W的钨卤灯,该系统首先实现了荧光激发光源能量从0%-100%可调节,并通过光导纤维反馈控制激发能量在检测时间内保持稳定,有利于定量的准确性。另外,还通过采用均匀照射的激发装置、窄波带的滤光片等保证荧光成像能较好的去除背景噪音的影响,获得清晰的检测结果,较准确的定量数据。
为了对实验动物进行可见光成像,需要将实验动物进行麻醉,以获得期望的观察角度及稳定的数据。对于生物发光成像来说,由于检测的时间较长,一般建议使用气体麻醉。气体麻醉系统组成包括:气体蒸发器、诱导麻醉箱、流量调节阀、单独控制开关的五通道小鼠麻醉室、废气吸收装置等组成。在成像前,将实验动物置入诱导麻醉箱并被麻醉, 然后放入成像暗箱进行观察
软件系统负责仪器控制和图像分析。软件控制镜头的焦距、CCD的升降、曝光时间、滤光片的更换和照明灯的开启等,具有友好的用户界面,操作简便。
二、实验操作流程
1. 细胞标记或动物标记等
进行生物发光实验,首先根据实验内容的不同,用荧光素酶基因标记肿瘤细胞、干细胞、病毒、药物载体或动物,或者用Lux操纵子标记细菌。用荧光素酶基因标记可通过质粒、慢病毒或逆转录病毒等方法进行。
如果进行荧光实验,就用GFP、EGFP或RFP标记肿瘤细胞、干细胞、病毒或动物等,后者用荧光染料(包括量子点)标记需要检测的物质,如抗体,药物载体等。
2. 体外预实验检测
需要检测的细胞、病毒、细菌等标记后,在活体成像前,可以通过多孔板预先检测一下标记是否成功,荧光素酶或荧光蛋白的表达强度等,并据此筛选阳性克隆、绘制标记物的发光梯度曲线等。体外预实验是作为小动物活体成像解决方案中不可缺少的一部分。比如,利用体外预实验初步检测转染荧光素酶的肿瘤细胞发光值,选择转染率相对高且稳定的一批细胞进行体内实验。对于通常进行的细胞检测来说,具体可以通过活体成像仪器检测活细胞的发光强度,也可以通过体外化学发光和荧光检测仪检测细胞裂解液的发光强度。
当用体外化学发光和荧光检测仪时,可以更准确地捕捉到发光值、更稳定的输出发光值。对于生物发光方式而言,实验所需的仪器是微孔板式化学发光检测仪,如Berthold Centro LB 960。对于荧光方式而言,实验所需的仪器是微孔板式荧光检测仪,如Berthold TwinkleTM LB 970。(图1)
图1.左侧为Berthold Centro LB 960,右侧为Berthold TwinkleTM LB 970
3. 活体成像
首先麻醉实验动物,可采用异氟烷(isoflurane)或克他命/甲苯噻嗪(ketamine/xylazine)混合液麻醉实验动物。如果采用气体麻醉,可先注射底物。气体麻醉的优点是动物可以很快进入麻醉状态,一旦停止麻醉气体供应,动物会在几分钟内苏醒。
对于生物发光实验来说,接着注射底物荧光素。最佳的检测时间是在注射后15到35分钟之间。但需要注意的是,对于不同的动物模型,发光动力学过程并不完全一致,最好先进行预实验确定何时发光信号最强。
成像,对于生物发光来说,检测时间一般是1分钟到5分钟,如果信号特别弱,也可以延长到10分钟,如果信号特别强,也可在1分钟以内。对于荧光来说,检测时间是1秒以内。为节约时间,检测生物发光,最多可同时检测5只小鼠。对于荧光实验,麻醉好就可以马上检测。由于激发光照射的角度会影响检测的信号值,所以荧光实验建议每次只检测1只动物。
编辑: cq