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真核重组让研究更有价值
● 真核细胞本身的蛋白,尽量用真核表达,真核的表达环境使蛋白更有可能形成正确的结构,具备糖基化等修饰,更可能具有天然功能。而目前生命科学研究中,研究的模式生物大都为真核生物。
● 在真核细胞表达真核细胞的蛋白,折叠、修饰等方面更接近于天然蛋白,一般内毒素更低。这样试验过程才更接近真实的细胞活动。
● 如果你的运气足够好,发现你的实验结果可以为药物开发提供线索。恭喜你!如果你的实验是用真核表达的重组蛋白完成的,药企肯定会更感兴趣,因为这样的药物候选分子商业化风险更小。
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培养细胞的冷冻保存与复苏
冻存细胞的复苏
非玻璃化冻存的复苏方法
主要材料
(1)仪器设备:恒温水浴箱、高速离心机;
(2)培养用液:完全培养液。
复苏过程
(1)调配37℃~40℃的温水,或将恒温水浴箱的温度调节至37℃~40℃;
(2)从液氮中取出冻存管,立即投入37℃~40℃ 温水中迅速晃动,直至冻存液完全溶解;
(3)将细胞冻存悬液转移到离心管内,加入约5ml培养液,轻轻吹打混匀;
(4)将细胞悬液经800~1000r/min离心5min,弃上清夜;
(5)向细胞沉淀内加入完全培养液,轻轻吹打混匀,将细胞悬液转移到培养瓶内,补足培养液进行培养。
结果
复苏后的细胞应该保持其冻存时的活力,活细胞数达90%以上。
讨论
细胞冻存悬液一旦融解后,要尽快离心除去冷冻保护液,防止冷冻保护剂对细胞产生毒性。实验人员在复苏细胞过程中,同样应具有自我保护意识,避免被液氮冻伤。
玻璃化冻存的复苏方法
以下以人的单核细胞为例说明其过程(Takhashi et al. 1986)。
主要材料
(1)设备:高速离心机;
(2)培养用液:添加20%胎牛血清的Hanks平衡盐溶液、培养液。
操作过程
(1)将冻存管从液氮中取出,立即投入冰浴中5min。复温速率约5600C/min。一次可以进行多个冻存管的复苏;
(2)将冻存管两端剪断,可以将5ml细胞冻存悬液转移到50ml离心管中;
(3)沿离心管壁缓慢加入已在冰浴中预冷的含20%胎牛血清的Hanks平衡盐溶液。前10min以0.2ml/min的速度加入,后10min以0.5ml/min的速度加入,接着的15min以0.75ml/min的速度加入,最后30min以1ml/min的速度加入。全过程约为65min,都在冰浴中进行;
(4)将稀释后的细胞悬液以400r/min离心5min,去除上清。向细胞沉淀中加入培养液重新悬浮细胞,用于培养。
结果
复苏后的细胞应该保存其冻存时的活力,活细胞数达90%以上。
讨论
复苏时,冷冻保护液的稀释及去除过程与冻存前冷冻保护液的滴加过程一样,不能在室温下而必须在40C冰浴中进行,避免在室温下冷冻保护剂对细胞产生毒性。稀释过程也要缓慢进行,保证有足够的时间让冷冻保护剂从细胞内渗出,以达到细胞内外的平衡,避免高渗透压的损伤。
编辑: cq